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用多聚甲醛固定懸浮細胞

更新時間:2012-02-10點擊次數(shù):14449
所有的固定方案必須做到:①防止抗原丟失;②透化細胞以便使抗體進入;③盡量使抗原保持能與抗體結(jié)合的狀態(tài);④維持細胞正常結(jié)構(gòu)。
 
    常用的固定劑種類很多,固定劑的正確選擇取決于被研究抗原的性質(zhì)及所用抗體的特性。固定劑可分為兩大類:有機溶劑和交聯(lián)劑。有機溶劑如乙醇和丙酮能夠去除脂類物質(zhì)使細胞脫水,把蛋白質(zhì)沉淀在細胞結(jié)構(gòu)上。交聯(lián)劑一般通過自由氨基基團把生物分子橋連起來,形成一個相互連接的抗原網(wǎng)。兩種方法均使蛋白質(zhì)抗原部分變性。因此,在細胞染色中,能夠識別變性蛋白的抗體更加有用。在某些情況下,只有用此類抗體才能得到滿意的結(jié)果。
 
    往往憑經(jīng)驗選擇固定劑。雖然許多人發(fā)現(xiàn)用交聯(lián)劑固定細胞可以獲得較好的結(jié)果,但沒有通用規(guī)則可以參考??梢栽囉脙煞N方法,然后選擇較好的一種。
 
    懸浮細胞染色通常用于檢測細胞表面抗原。因為細胞呈懸浮狀態(tài),洗滌過程復(fù)雜,因此,應(yīng)注意離心時間不要過長或轉(zhuǎn)速太高。
 
    1.所需溶液
    4%多聚甲醛(臨用前配制)、PBS。
 
    2.操作步驟
    (1)PBS配制4%多聚甲醛;
    (2)用PBS洗滌細胞2次,用200g離心5min;重懸細胞。
    (3)小心用4%多聚甲醛溶液懸浮細胞,細胞濃度約為1X106/m1 15min,間或搖動;
    (4)200g離心5rain,用PBS重懸細胞,重復(fù)洗滌細胞2次;室溫下靜置
    (5)用含0.2%TritonX-100或NP-40的PBS溶液透化細胞2min(室溫),有的抗原需15min,具體時間視抗原而定;
    (6)200g離心5rain,用PBS重懸細胞,重復(fù)洗滌細胞2次。 
    此時的細胞標本可用于后續(xù)的抗體檢測。
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